Открытый доступ
Доступ платный или только для подписчиков
Моделирование взаимодействия липосомы с винпоцетином с плоской клеточной мембраной методом молекулярной динамики
Аннотация
Представлены результаты моделирования процесса сборки липосомы из фосфолипидов соевого лецитина в присутствии винпоцетина, а также взаимодействия липосомы с винпоцетином с плоской клеточной мембраной методом молекулярной динамики. Образование липосом сферической формы из очищенного соевого лецитина в водной среде в присутствии винпоцетина в кислой среде происходит самопроизвольно при концентрации лецитина 5 % по массе при 298 К в течение 3 мкc. Молекулы винпоцетина располагаются как на внутренней, так и на внешней поверхности липосомы. Во внутренней полости образовавшейся липосомы располагается 51 молекула винпоцетина. По результатам моделирования крупнозернистой молекулярной динамики липосома из очищенного соевого лецитина с винпоцетином, адсорбированным на ее внутренней и внешней поверхностях, способна сливаться с клеточной мембраной эндотелиоцита. Молекулы винпоцетина, находящиеся внутри липосомы в процессе слияния липосомы с клеточной мембраной, располагаются на внутриклеточной поверхности цитоплазматической мембраны эндотелиоцита.
DOI: 10.30906/2073-8099-2023-15-2-16-21
Ключевые слова
Ссылки
Neuwelt E., Abbott N. J., Abrey L., Banks W. A., Blakley B., Davis T., Engelhardt B. / Lancet Neurol. 2008. V. 7. No. 1. P. 84 – 96. DOI: 10.1016/ S1474-4422(07)70326-5.
Hou G., Niu J., Song F., Liu Z. / J. Chromatogr. B. 2013. V. 923 – 924. P. 1 – 7. DOI: 10.1016/j.jchromb. 2013.01.035.
Xiaoli L., Xiaoyong R., Jianmin L., Weijun M., Zhenghui W., Zhuangqun Y. / Int. J. Nanomed. 2017. V. 2017. No. 12. P. 6963 – 6972. DOI: 10.2147/IJN. S144056.
Ding J., Li J., Mao S. / Asian J. Pharm. Sci. 2015. V. 10. P. 114 – 120. DOI: 10.1016/j.ajps.2014.08.008.
Golob S., Perry M. L., Lusi M., Chierotti M. R., Grabnar I., Voinovich D., Zaworotko M. J. / J. Pharm. Sci. 2016. V. 105. No. 12. P. 3626 – 3633.
Полковникова Ю. А. / Разраб. и рег. лек. средств. 2021. Т. 10. № 3. С. 42 – 46. DOI: 10.33380/ 2305-2066-2021-10-3-83-87.
Полковникова Ю. А., Корянова К. Н., Сливкин А. И. / Биофарм. журн. 2019. Т. 11. № 4. С. 47 – 53.
Dwiastuti R., Radifar M., Noegrohati S., Istyastono E. P. / Indones. J. Chem. 2016. V. 16. P. 222 – 228. DOI: 10.14499/ijc-v16i2p222-228.
Marrink S. J., Risselada H. J., Yefimov S., Tieleman D. P., de Vries A. H. / J. Phys. Chem. B. 2007. V. 111. P. 7812 – 7824. DOI: 10.1021/jp071097f.
Jo S., Kim T., Iyer V. G., Im W. / J. Comput. Chem. 2008. V. 29. P. 1859 – 1865. DOI: 10.1002/jcc.20945.
Qi Y., Ing?lfsson H. I., Cheng X., Lee J., Marrink S. J., Im W. / J. Chem. Theor. Comput. 2015. V. 11. P. 4486 – 4494. DOI: 10.1021/acs.jctc.5b00513.
Hsu P.-C., Bruininks B. M. H., Jefferies D., Souza P. C. T., Lee J., Patel D. S., Marrink S. J., Qi Y., Khalid S., Im W. / J. Comput. Chem. 2017. V. 38. No. 27. P. 2354 – 2363. DOI: 10.1002/jcc.24895.
Van Hoogevest P., Wendel A. / Eur. J. Lipid Sci. Technol. 2014. V. 116. P. 1088 – 1110. DOI: 10.1002/ ejlt.201400219.
Teppen J. B. / J. Chem. Inf. Comput. Sci. 1992. V. 32. P. 757 – 759.
Berendsen H. J. C., Postma J. P. M., van Gunsteren W., DiNola F. A., Haak J. R. / J. Chem. Phys. 1984. V. 81. P. 3684 – 3690. DOI:10.1063/1.448118.
Cansell M., Gouygoub J.-P., Jozefonvicza J., Letourneura D. / Lipids. 1997. V. 32. P. 39 – 44. DOI: 10.1007/s11745-997-0006-3.
Xie J. Y., Ding J. H., Karttunen M. / Biochim. Biophys. Acta. 2014. V. 1838. P. 994 – 1002. DOI: 10.1016/j.bbamem.2013.12.011.
Wang X., Liu W., Du K. / Mol. Membr. Biol. 2011. V. 28. P. 115 – 122. DOI: 10.3109/09687688.2010. 536169.
Ссылки
- Ссылки не определены.
** ** ** ** ** **
ISSN: 2073-8099
** ** ** ** ** **
Подписаться на наши издания Вы можете через почтовые каталоги Объединенный каталог «Пресса России» «Урал Пресс», «Ивис», «Прессинформ» и «Профиздат».
Наши партнеры:
iIPhEB - Международная выставка и форум по фармацевтике и биотехнологиям, 2–4 апреля 2024